Галина Ильенко

До недавнего времени в терапии животных, больных гастроэнтеритами, большое значение придавалось лишь борьбе с условно-патогенной микрофлорой путем использования антимикробных средств. Однако длительное и бездумное применение антимикробных препаратов приводит к снижению их эффективности, часто - к развитию дисбактериоза и даже к нарушению функции печени, что еще более усугубляет процесс, усиливая интоксикацию и вызывая у молодняка тяжелое течение болезни. Поэтому нами был проведен мини-эксперимент по применению пробиотика «Споровит» - как хорошо зарекомендовавшего себя средства, применяемого для молодняка в ЛПХ, и на нашей МТФ.

Испытание проводилось в течении нескольких месяцев. В ходе эксперимента подбирались телята с аналогичной клинической картиной (угнетение, ослабление аппетита, разжижение стула), примерно одного возраста (от 7 до 15 дней). При этом, дабы снизить влияние меняющихся факторов – смены кормов, погодных условий и т.д., «контрольное» и «опытное» лечение применялось поочередно к каждому следующему подходящему для эксперимента теленку.

Для испытания пробиотика «Споровит» было сформировано две группы телят: «контрольная» и «опытная». В каждой группе находилось 10 телят. Лечение «контрольной» группы проводилось по общепринятой для хозяйства схеме лечения («Неострепин 400 ЛА» в/м 6 мл в 1 день, «Айсидивит» в/м 2 мл в 1 и 4 день, «Катозал» п/к 5 мл 3 дня, «МиаФерстЭйд П» в 1 день 10 г в 1 литре воды 1:1 с молоком два раза в день, во 2 день – 10 г в 500 мл воды, 1:4 к выпойке 2 раза в день), в «опытную» был включен пробиотик «Споровит» (6 мл, растворенных вместе с МиаФерстЭйд П).

В начале и в конце опыта у 4 телят из каждой группы была взята кровь для определения основных показателей: гемоглобин, эритроциты, лейкоциты, СОЭ. Результаты приведены в таблице.

Клинико-физические показатели телят у опытной группы нормализовались в среднем уже на третью пойку, а контрольной группы – на четвертую. После проведения лечения показатели крови опытной группы были лучше, чем контрольной.

Также для учета привеса молодняка проводилось взвешивание 4 телят из каждой группы в первый день опыта и через месяц. Среднесуточный привес «опытной» группы телят: (245-203кг)/30дней/4головы=0,350кг=350 граммов. Среднесуточный привет «контрольной» группы телят: (234-199кг)/30/4головы =0,292 кг=292граммов Разница в среднесуточных привесах: 58грамм.

Данный препарат теперь постоянно включаем в схемы лечения. Однако, до «тотальной» терапии дело обычно не доходит. Начинаем действовать при первых же «звоночках» - внезапно недопил выпойку / нехотя поднялся / началось разжижение стула. Сразу добавляем в выпойку 10г МиаФерстЭйд П и 2 г «Споровита» в 200 мл теплой воды – утром и вечером, в/м айсидивит 2 мл. Симптомов как не бывало. Выбытия и, тем более, падежа по заболеваниям ЖКТ нет вообще. Клиническая картина диспепсии и гастроэнтерита, требующая применения антибиотика – редкий случай, примерно 1:20, притом купируется буквально за пару дней.

Для эксперимента было выбрано три, наиболее эффективных по результатам подтитровки, антибиотика – Энролокс 5%, Кобактан и Кламоксил LA. Определяли токсичность антибиотиков на мухах-дрозофилах, мышах и непосредственно при лечении телят в случаях токсической диспепсии. Исследование проводилось в небольшом хозяйстве с дойным поголовьем менее 150 голов, в котором часто встречаются расстройства ЖКТ у молодняка.

Этап 1: Определение токсичности антибиотиков на мухах-дрозофилах.

Для определения токсичности антибиотиков на мухах дрозофилах по определенному рецепту (агар-агар, дрожжи, манная крупа, сахар, пропионовая кислота) была приготовлена питательная среда, с добавлением в разных процентных соотношениях исследуемых антибиотиков. На питательную среду были посажены мухи Drosophila melanogaster.

Результаты исследования на мухах-дрозофилах :

В среде с 50% содержанием антибиотика все мухи погибли. При 30% содержании антибиотиков, в среде с Энрофлоксом и Кобактаном все мухи погибли, в то время как на среде с Кламоксилом LA выживаемость мух достигла 30%. При 20% содержании антибиотика в среде с Энрофлоксом все мухи погибли, в среде с Кобактаном выживаемость мух достигла 30% и в среде с Кламоксилом LA 70%.

Этап 2: Определение токсичности на мышах.

Для исследования антибиотиков на токсичность было сформировано четыре группы мышей, по семь мышей в каждой группе. Первой группе мышей применялся антибиотик Энрофлокс, второй - Кобактан, третьей – Кламоксил. Четвертая группа была контрольная - она содержалась в тех же условиях, что и первые три группы, но без применения антибиотиков. Антибиотики вводились перорально через специальный инсулиновый шприц-катетер в соответствии с инструкцией к препарату (в максимально допустимых дозировках максимально допустимое количество дней) в пересчете на среднюю массу тела мыши.

За мышами проводилось ежедневное наблюдение. Фиксировались признаки интоксикации, поведение, аппетит, состояние каловых масс. Каждую неделю мыши взвешивались. Все данные фиксировались в дневник наблюдений. На 7 день проводилось вскрытие.

Результаты исследования на мышах:

За время исследования наибольшие признаки интоксикации наблюдались у мышей, которым применялся антибиотик Энрофлокс. Животные на протяжении третьей и четвертой недели были вялые, имели менее сформированные каловые массы темного цвета с примесью слизи; имели слабый аппетит; потеряли около 10% веса от начальной массы тела. У мышей, которым применялся антибиотик Кобактан, наблюдалась гипервентиляция легких.

При вскрытии были выявлены следующие патологоанатомические изменения:

В группе мышей, которым применялся антибиотик Энрофлокс, у всех животных был выявлен гепатоз разной стадии. У двух мышей печень была не увеличена, охряно-желтого цвета. У трех мышей печень имела красно-коричневый оттенок с бледно-серыми пятнами, края заострены, полупрозрачные. У двух - орган не изменен. Кроме того, у трех мышей было выявлено катаральное воспаление желудка и кишечника, а у двух мышей наблюдались признаки нефроза - почки имели размягченную консистенцию, характерный рисунок строения стерт.

В группе мышей, которым применялся антибиотик Кобактан, у трех мышей наблюдался отек легких. Легкие увеличены, темно-красного цвета, покрыты многочисленными точечными кровоизлияниями по всей поверх-ности. У пяти животных наблюдалось увеличение сердца, а также у некоторых мышей наблюдалось незначительное увеличение печени и почек.

В группе мышей, которым применялся антибиотик Кламоксил, у двух мышей наблюдалось незначительное увеличение печени и почек. У остальных животных патологоанатомических изменений не выявлено.

У мышей из группы «контроль» патологоанатомического изменения органов не наблюдалось.

Этап 3: Применение антибиотиков в схемах лечения телят и оценка токсичности антибиотиков по результатам исследования крови.

Для эксперимента подбирались телята с примерно одинаковой тяжестью заболевания, одинакового возраста (от 5 до 12 дней), по пять телят для каждого антибиотика (исследование проводилось на протяжении полугода, лечение проводилось в разное время, но при одинаковых обстоятельствах).

Для лечения телят применялись схемы лечения, включающие противомикробное средство - антибиотик (Энрофлокс, Кламоксил или Кобактан), витаминные средства (Айсидивит и Катозал), раствор-электролитов ( МиаФерстЭйд П). Схемы отличались лишь используемыми антибиотиками, которые применялись согласно инструкции. Расчет дозировки производился согласно весу в максимально допустимых концентрациях максимально допустимое количество дней.

После курса лечения было проведено исследование крови телят. Исследование крови на основные показатели (лейкоциты, эритроциты, тром-боциты, гемоглобин и др.) проводилось на гематологическом анализаторе “PCE 90 VET”. Исследование сыворотки крови проводилось на биохимическом анализаторе Vet Test. Определялась АЛТ– аламинаминотрансфераза – печеночный показатель и общий билирубин.

Результаты:

Общее исследование крови показало снижение гемоглобина и незначительное увеличение лейкоцитов у двух телят, в схеме лечения которых применялся Энрофлокс. Показатели крови телят, в схеме лечения которых использовались антибиотики Кламоксил и Кобактан, соответствовали норме.

Б) Биохимическое исследование крови: У двух телят, в схемах лечения которых применялись антибиотики Энрофлокс и одного, которому применялся Кобактан, АЛТ – аламинаминотрансфераза – печеночный показатель был незначительно увеличен, а общий билирубин повышен. У теленка, в схеме которого использовался антибиотик Кламоксил, показатель АЛТ и общего билирубина соответствовал норме.

Выводы по проведенному исследованию и рекомендации хозяйствам:

При проведении исследования токсичности используемых в хозяйстве противомикробных средств, антибиотик «Энрофлокс» показал высокую степень токсичности на мухах дрозофилах и мышах, биохимическое исследовании крови выявило незначительное нарушение физиологии печени после курса лечения данным препаратом. Антибиотик Кобактан показал среднюю степень токсичности на мухах дрозофилах и мышах. Кламоксил показал наименьшую степень токсичности на мухах дрозофилах и мышах и не вызвал отклонений в функционировании печени после курса лечения.

Хозяйствам рекомендуем делать акцент на профилактику заболеваний ЖКТ у молодняка посредством нормализации выпойки молозива и обеспечения хороших условий содержания, чтобы не допускать применение инъекционных антибиотиков для лечения животных. Особенно важно не доводить до лечения антибиотиками племенных телок. В случае же возникновения диспепсии у телят в хозяйствах рекомендуется использовать антибиотик Кламоксил (при чувствительности микрофлоры к данному препарату) как наименее токсичный и имеющий хороший терапевтический эффект без осложнений после курса лечения. Энрофлокс и Кобактан рекомендуется применять только как резервный антибиотик и минимально эффективными курсами.