Определение токсичности антибиотиков, применяемых при лечении телят.
703
Для эксперимента было выбрано три, наиболее эффективных по результатам подтитровки, антибиотика – Энролокс 5%, Кобактан и Кламоксил LA. Определяли токсичность антибиотиков на мухах-дрозофилах, мышах и непосредственно при лечении телят в случаях токсической диспепсии. Исследование проводилось в небольшом хозяйстве с дойным поголовьем менее 150 голов, в котором часто встречаются расстройства ЖКТ у молодняка.
Этап 1: Определение токсичности антибиотиков на мухах-дрозофилах.
Для определения токсичности антибиотиков на мухах дрозофилах по определенному рецепту (агар-агар, дрожжи, манная крупа, сахар, пропионовая кислота) была приготовлена питательная среда, с добавлением в разных процентных соотношениях исследуемых антибиотиков. На питательную среду были посажены мухи Drosophila melanogaster.
Результаты исследования на мухах-дрозофилах :
В среде с 50% содержанием антибиотика все мухи погибли. При 30% содержании антибиотиков, в среде с Энрофлоксом и Кобактаном все мухи погибли, в то время как на среде с Кламоксилом LA выживаемость мух достигла 30%. При 20% содержании антибиотика в среде с Энрофлоксом все мухи погибли, в среде с Кобактаном выживаемость мух достигла 30% и в среде с Кламоксилом LA 70%.
Этап 2: Определение токсичности на мышах.
Для исследования антибиотиков на токсичность было сформировано четыре группы мышей, по семь мышей в каждой группе. Первой группе мышей применялся антибиотик Энрофлокс, второй - Кобактан, третьей – Кламоксил. Четвертая группа была контрольная - она содержалась в тех же условиях, что и первые три группы, но без применения антибиотиков. Антибиотики вводились перорально через специальный инсулиновый шприц-катетер в соответствии с инструкцией к препарату (в максимально допустимых дозировках максимально допустимое количество дней) в пересчете на среднюю массу тела мыши.
За мышами проводилось ежедневное наблюдение. Фиксировались признаки интоксикации, поведение, аппетит, состояние каловых масс. Каждую неделю мыши взвешивались. Все данные фиксировались в дневник наблюдений. На 7 день проводилось вскрытие.
Результаты исследования на мышах:
За время исследования наибольшие признаки интоксикации наблюдались у мышей, которым применялся антибиотик Энрофлокс. Животные на протяжении третьей и четвертой недели были вялые, имели менее сформированные каловые массы темного цвета с примесью слизи; имели слабый аппетит; потеряли около 10% веса от начальной массы тела. У мышей, которым применялся антибиотик Кобактан, наблюдалась гипервентиляция легких.
При вскрытии были выявлены следующие патологоанатомические изменения:
В группе мышей, которым применялся антибиотик Энрофлокс, у всех животных был выявлен гепатоз разной стадии. У двух мышей печень была не увеличена, охряно-желтого цвета. У трех мышей печень имела красно-коричневый оттенок с бледно-серыми пятнами, края заострены, полупрозрачные. У двух - орган не изменен. Кроме того, у трех мышей было выявлено катаральное воспаление желудка и кишечника, а у двух мышей наблюдались признаки нефроза - почки имели размягченную консистенцию, характерный рисунок строения стерт.
В группе мышей, которым применялся антибиотик Кобактан, у трех мышей наблюдался отек легких. Легкие увеличены, темно-красного цвета, покрыты многочисленными точечными кровоизлияниями по всей поверх-ности. У пяти животных наблюдалось увеличение сердца, а также у некоторых мышей наблюдалось незначительное увеличение печени и почек.
В группе мышей, которым применялся антибиотик Кламоксил, у двух мышей наблюдалось незначительное увеличение печени и почек. У остальных животных патологоанатомических изменений не выявлено.
У мышей из группы «контроль» патологоанатомического изменения органов не наблюдалось.
Этап 3: Применение антибиотиков в схемах лечения телят и оценка токсичности антибиотиков по результатам исследования крови.
Для эксперимента подбирались телята с примерно одинаковой тяжестью заболевания, одинакового возраста (от 5 до 12 дней), по пять телят для каждого антибиотика (исследование проводилось на протяжении полугода, лечение проводилось в разное время, но при одинаковых обстоятельствах).
Для лечения телят применялись схемы лечения, включающие противомикробное средство - антибиотик (Энрофлокс, Кламоксил или Кобактан), витаминные средства (Айсидивит и Катозал), раствор-электролитов ( МиаФерстЭйд П). Схемы отличались лишь используемыми антибиотиками, которые применялись согласно инструкции. Расчет дозировки производился согласно весу в максимально допустимых концентрациях максимально допустимое количество дней.
После курса лечения было проведено исследование крови телят. Исследование крови на основные показатели (лейкоциты, эритроциты, тром-боциты, гемоглобин и др.) проводилось на гематологическом анализаторе “PCE 90 VET”. Исследование сыворотки крови проводилось на биохимическом анализаторе Vet Test. Определялась АЛТ– аламинаминотрансфераза – печеночный показатель и общий билирубин.
Результаты:
Общее исследование крови показало снижение гемоглобина и незначительное увеличение лейкоцитов у двух телят, в схеме лечения которых применялся Энрофлокс. Показатели крови телят, в схеме лечения которых использовались антибиотики Кламоксил и Кобактан, соответствовали норме.
Б) Биохимическое исследование крови: У двух телят, в схемах лечения которых применялись антибиотики Энрофлокс и одного, которому применялся Кобактан, АЛТ – аламинаминотрансфераза – печеночный показатель был незначительно увеличен, а общий билирубин повышен. У теленка, в схеме которого использовался антибиотик Кламоксил, показатель АЛТ и общего билирубина соответствовал норме.
Выводы по проведенному исследованию и рекомендации хозяйствам:
При проведении исследования токсичности используемых в хозяйстве противомикробных средств, антибиотик «Энрофлокс» показал высокую степень токсичности на мухах дрозофилах и мышах, биохимическое исследовании крови выявило незначительное нарушение физиологии печени после курса лечения данным препаратом. Антибиотик Кобактан показал среднюю степень токсичности на мухах дрозофилах и мышах. Кламоксил показал наименьшую степень токсичности на мухах дрозофилах и мышах и не вызвал отклонений в функционировании печени после курса лечения.
Хозяйствам рекомендуем делать акцент на профилактику заболеваний ЖКТ у молодняка посредством нормализации выпойки молозива и обеспечения хороших условий содержания, чтобы не допускать применение инъекционных антибиотиков для лечения животных. Особенно важно не доводить до лечения антибиотиками племенных телок. В случае же возникновения диспепсии у телят в хозяйствах рекомендуется использовать антибиотик Кламоксил (при чувствительности микрофлоры к данному препарату) как наименее токсичный и имеющий хороший терапевтический эффект без осложнений после курса лечения. Энрофлокс и Кобактан рекомендуется применять только как резервный антибиотик и минимально эффективными курсами.
Опубликовано: 11 января, 2020 в 17:39
Похожие посты
Вопросы из чатов: как улучшить состояние копыт?
Водка в ветеринарной практике
Родовспоможение корове при неправильном положении плода
Вопросы из чатов: какие вакцины и витамины вводят новорожденным телятам?
Вопросы из чатов: о механическом отделении последа
10 комментариев
Рецепт: вода 100 мл агар-агар 1,3 г дрожжи 11,4 г манная крупа 4,3 г сахар 3,7 г пропионовая кислота 0,3 мл.
Делала в микроволновке. Сначала доводим до кипения воду. Добавляем дрожжи, даем постоять минут пять. Оттуда берём 5 мл дрожжевого молочка и откладываем. В остальную смесь вмешиваем агар-агар. Честно, не знаю, можно ли его заменить на желатин. Но он вообще в интерспаре продается для пищевых целей, это точно. Можно найти не в хим магазинах. Также всыпаем манку и сахар. И варим все до закипания, мешая пару раз. После остужаем до 60с и добавляем пропионовую кислоту. Где ее купить - честно, не знаю. Мы брали в лаборатории немного. Можно ли заменить ее тоже не в курсе, к сожалению. Думаю, ее можно в интернете заказать.
Уже в готовую среду добавляем любое вещество, которое нужно протестировать на токсичность в разных концентрациях (20, 30, 50%). Садим мух. Результат оцениваем через 12 и 24 часа.